Вакцинация переболевших ПАН и КОРОНА, и ЗДОРОВЫХ

[vikidm]

Друзья, возможно у Вас кошка перенесла ПАН или имеет Титры к Короне, скажем так повышенные (80-320), при ОАК приличном.
Понятно, что она имеет пожизненный иммунитет к ПАН, и при Короне её иммунная система очень чувствительна.
Но прививать то нужно! мало ли в клинике....подхватить чего, мало ли необходимо полежать в стационаре- защита нам нужна!!!

Обратите внимание, что не очень давно у производителя вакцин НОБИВАК появилась вакцина БЕЗ ПАН - нобивак- ДУкэт , к.содержит только калици+рино .
Т.е. переболев ПАН использовать только ДУкэт
с Короной- раз/три года ТРИкэт (с ПАН), сл. два года ДУкэт (без ПАН).
---------------------
Если ещё у кошки носительство калици (т.е. ТРИ раза подряд ежегодно ПЦР +), здесь стоит посоветоваться с врачом, т.к. в нобиваке все компаненты ЖИВЫЕ, а нам нужна на калици мёртвая (Пуревакс), но она с ПАН.
Хотя, не один врач мне не дал ответ о вреде ЖИВОЙ-калици при носительстве калици.
-------------------------------------
ЗДОРОВЫЕ кошки (условно)
Производитель гарантирует, что живая вакцина ПАН "держит" ТРИ года, так зачем же колоть ежегодно, подвергая иммунку испытаниям.
СХЕМА:
1 год ТРИКЭТ
2 и 3 ДУКЭТ
и так далее, чередуя.

А ЭТО был 2013год. советы врачей

На вопросы ответил Пака Марк , ветеринарный врач, клиника ”Белый Клык”
http://zooforum.ru/index.php?showtopic=237...mp;#entry284785
Цитата(mark @ 24 Февраль 2013 - 10:19) *
первая вакцинация независимо от возраста рекомендована двукратная. квадрикат и квадрикат это нормально. нет особой разницы и при комбинации вакцин разных производителей. кота с короновирусным носительством я бы вакцинировал реже, например раз в 3 года. Кастрация часто является жизнесберегающим вмешательствам, то есть если владельцы терпят метящего кота - ждите отрицательных результатов двукратных, если не терпят - кастрируйте. Примерно так.

Скороходов ВА ответил:
"Здравствуйте.
Наличие короновироза у кошки (кошек) никак не влияет на график вакцинации. Пока нет в стране разделения вакцин на панлейкопению и герпес с калицивирусом нужно просто ежегодно вакцинировать от всех трёх, в случае с Пуреваксом от 4, т.к. и от хламидиоза. Если кошки выезжают на дачу, то и от бешенства ежегодно.
Важно не стать разносчиком короновироза среди других кошек, т.е. не выгуливать кошек в парках или на даче не выпускать за пределы дома.
Кстати, я от заводчиков узнал, что представители лаборатории Лабоклин приезжают на некоторые породные и межпородные выставки для забора анализов, не только к врачам на конференции. " Изменено 9 июня, 2017 пользователем vikidm

[ficus]

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

В том, что касается базовых вакцин для кошек, важно понимать, что защита, которую предоставляют вакцины против FCV и FHV-1, не сопоставима с иммунитетом, который обеспечивают вакцины против FPV. Поэтому от базовых вакцин для кошек против респираторных болезней не следует ожидать, что они дадут такую же стойкую защиту либо длительность иммунитета, которая наблюдается у базовых вакцин для собак. Вакцины против FCV были разработаны для выработки перекрестного иммунитета против многочисленных штаммов FCV, однако все еще возможны случаи инфицирования и заболевания вакцинированных взрослых животных (Pedersen et al. 2000, Schorr-Evans et al. 2003) [EB1]. Нет вакцины против FHV-1, которая могла бы защитить от заражения вирулентным вирусом, и такое инфицирование может протекать латентно с сохранением возможности реактивации вирулентного вируса в периоды сильного стресса (Richter et al. 2009, Maes 2012) [EB1]. Реактивировавшись, вирус может вызвать появление клинических признаков у вакцинированного животного или будет выделяться и вызывать заболевание у восприимчивых животных. Группа VGG рекомендует ревакцинацию кошек с низким риском заражения против FHV-1 и FCV один раз в три года на основании опубликованного исследования, согласно которому минимальная длительность частичного, но клинически значимого иммунитета для этих базовых вакцин составляет 7,5 лет (Scott & Geissinger 1999). Более позднее исследование МЖВ вакцин против FHV-1/FCV показало, что через 3 года после вакцинации защита против FHV-1 является частичной и намного менее надежна, хотя результаты для частичной защиты от FCV были сопоставимы с результатами, полученными Скоттом (Scott) и Гейзингером (Geissinger) в 1999 году (Jas et al. 2015) [EB1]. Группа VGG рекомендует проводить ежегодную ревакцинацию кошек против FHV-1/FCV в случаях высокого риска заражения. Кошкой, имеющей низкий риск заражения, можно считать животное домашнего содержания, являющееся единственным у владельцев и не посещающее зоогостиниц. Кошку с высоким риском можно охарактеризовать как животное, которое регулярно бывает в зоогостиницах, либо живет в доме, где содержат несколько кошек, с возможностью выгула на улице. Более того, группа VGG советует практикующим ветеринарным врачам обдумать сроки введения вакцин против FHV-1/FCV кошкам, подверженным высокому риску, если их регулярно отдают в зоогостиницы. Самый стойкий иммунитет, обеспечиваемый этими вакцинами, приходится на 3-месячный период после вакцинации (Gaskell et al. 2007) [EB1], поэтому, возможно, лучше вводить их кошке, которая регулярно бывает в зоогостинице, непосредственно перед ежегодным размещением в ней.

стр. 56

СПРАВОЧНЫЕ ДАННЫЕ: ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ГЕРПЕСВИРУСА КОШЕК
(FELINE HERPESVIRUS (FHV)-1 VACCINES)

Виды имеющихся вакцин
МЖВ вакцины: Такие препараты содержат аттенуированный FHV-1 (вирус ринотрахеита кошек, встречающийся как единственный серотип) в различных титрах, без адъюванта. Существуют инъекционные препараты и препараты для интраназального применения, содержащие только FHV-1 и FCV или FHV-1 и FCV в сочетании с другими вакцинными антигенами.
Инактивированные (убитые) вакцины: Имеются в продаже убитые адъювантные вакцины.

Механизм действия и длительность иммунитета
• Защита, которую обеспечивают вакцины против FHV-1 (как и против FCV), не такая полноценная, как у вакцин против FPV. Не нужно ожидать от этих двух базовых кошачьих вакцин (против FHV-1 и FCV), что они обеспечат столь же надежную степень защиты и длительность иммунитета, как собачьи базовые вакцины или вакцина против FPV.
• Оценка длительности иммунитета затруднительна. Полная клиническая защита наблюдается только в ближайшее время после вакцинации, степень защиты уменьшается со временем (Gaskell et al. 2007).
• Иммунитет после естественного инфицирования/переболевания далеко не полный, его длительность неодинакова.
• Было продемонстрировано сохранение титров антител в течение 3 лет после вакцинации убитой вакциной против FHV-1 (Scott & Geissinger 1997), но титры антител к FHV-1 плохо коррелируют с защитой (Gaskell et al. 2007).
• Защита при контрольном заражении вирулентным FHV-1 через 7,5 лет после вакцинации двумя дозами убитых вакцин не была полной, но была сопоставима с защитой через 1 год после введения убитых вакцин (Scott & Geissinger 1999).
• После завершения серии вакцинаций котенка в возрасте 16 недель или старше и повторной вакцинации в возрасте 26 или 52 недели кошек с низкой степенью риска заражения не следует ревакцинировать чаще, чем один раз в 3 года; но кошек с высокой степенью риска (например, регулярно посещающих кошачьи зоогостинницы) следует ревакцинировать чаще.
• Если у правильно вакцинированной ранее кошки истек срок очередной ревакцинации, однократная инъекция считается достаточной для возобновления иммунологической памяти.
• Ни одна из герпесвирусных вакцин не может защитить против инфицирования вирулентным вирусом, FHV-1 становится латентным (скрытым) и может реактивироваться во время сильного стресса. Реактивировавшийся вирус может вызвать появление клинических признаков у вакцинированных животных (Gaskell et al. 2007); вирус может выделяться, передаваться восприимчивым животным и стать причиной болезни восприимчивых котят и кошек (Gaskell et al. 2007).
• Клеточный иммунитет играет важную роль в защите, поэтому отсутствие антител на поддающемся обнаружению уровне в сыворотке крови вакцинированных кошек не обязательно означает, что кошки восприимчивы к болезни.
• Материнские антитела препятствуют активной иммунизации котят в течение разных периодов времени в зависимости от титра антител в молозиве и количества молозива, поглощенного после рождения. Первичную серию вакцинации обычно начинают в возрасте 6-8 недель. Материнские антитела меньше препятствуют иммунизации при интраназальном введении МЖВ вакцин, чем при их инъекционном введении. Можно предположить, что интраназальные вакцины будут иммунизировать котят с материнскими антителами раньше, чем инъекционные.
• В кошачьих питомниках заражение чаще проявляется у котят перед отъемом, обычно между 4-8 неделями жизни, поскольку уровень материнских антител падает. В большинстве случаев источником инфекции является кошка, у которой произошла реактивация латентного вируса из-за стресса, вызванного родами и лактацией.

Меры предосторожности
• Модифицированные живые инъекционные вакцины против FHV-1 и FCV сохраняют некоторый патогенный потенциал и могут вызывать болезнь при неправильном введении (то есть когда вакцина, оставшаяся на коже/шерсти, случайно распыляется, или проглатывается, или вдыхается).
• Признаки заболевания верхнего респираторного тракта иногда наблюдаются после интраназальной вакцинации.

Сведения о болезни
• Выделение вируса начинается уже через 24 часа после заражения и продолжается 1-3 недели.
• Острое заболевание проявляется через 2-6 дней и разрешается в течение 10-14 дней.
• Вирус распространяется по чувствительным (афферентным) нервам и достигает тел нейронов, особенно в тройничном ганглии, который является основным местом его локализации во время латентности (скрытого состояния). Большинство кошек становятся пожизненными латентными носителями, периодически выделяющими вирус после провоцирующих стресс событий (Gaskell et al. 2007). В противоположность этому, выделение FCV происходит непрерывно в течение нескольких месяцев после заражения. Геномная ДНК герпесвируса сохраняется в ядрах инфицированных нейронов без репликации.
• Вирус неустойчив в окружающей среде и инактивируется широко используемыми дезинфицирующими средствами.

СПРАВОЧНЫЕ ДАННЫЕ: ВАКЦИНЫ ПРОТИВ КАЛИЦИВИРУСА КОШЕК
(FELINE CALICIVIRUS (FCV) VACCINES)

Виды имеющихся вакцин
МЖВ вакцины: Такие препараты чаще всего содержат штамм калицивируса кошек F9 без адъюванта. Существуют инъекционные препараты и препараты для интраназального применения, содержащие только FHV-1 и FCV или FHV-1 и FCV в сочетании с другими вакцинными антигенами.
Инактивированные (убитые) вакцины: Убитые адъювантные вакцины также доступны. Одна убитая вакцина (неадъювантная) содержит два штамма калицивируса (штаммы G1 и 431; Poulet et al. 2005).

 
Механизм действия и длительность иммунитета
• Среди штаммов FCV существует значительная антигенная вариабельность (изменчивость). Предшествующее заражение одним штаммом может значительно снизить остроту клинических симптомов при воздействии другого гетерологичного штамма, а также снизить оральное выделение вируса. В целом, уровень гетерологичной защиты зависит от конкретных пар рассматриваемых штаммов вируса.
• Вируснейтрализующие антитела первоначально появляются приблизительно через 7 дней после инфицирования; их титры хорошо коррелируют с защитой против гомологичного контрольного заражения. Кошки также могут быть защищены в отсутствие сывороточных антител, поскольку, как было продемонстрировано, местные секреторные антитела IgA и клеточный ответ обеспечивают защиту у вакцинированных кошек.
• Было показано, что после вакцинации убитой адъювантной вакциной против FCV антитела сохраняются по меньшей мере в течение 4 лет (Scott & Geissinger 1997).
• Защита при контрольном заражении вирулентным FCV через 7,5 лет после вакцинации двумя дозами убитой адъювантной вакцины была неполной, но она была сопоставима с защитой через 1 год после введения убитых вакцин (Scott & Geissinger 1999).
• Защита, которую обеспечивают вакцины против FCV (как и вакцины против FHV-1), не такая полноценная, как у вакцин против FPV. Не следует ожидать от этих двух базовых респираторных вакцин, что они обеспечат столь же надежную степень защиты и длительность иммунитета, как вакцина против FPV или собачьи базовые вакцины. Возможно повторное инфицирование вакцинированных кошек различающимися штаммами FCV.
• После завершения серии вакцинаций котенка в возрасте 16 недель или старше и повторной вакцинации в возрасте 26 или 52 недели кошек с низкой степенью риска заражения не следует ревакцинировать чаще, чем один раз в 3 года; но кошек с высокой степенью риска (например, регулярно посещающих кошачьи зоогостинницы) можно ревакцинировать чаще.
• Для серии вакцинаций котят рекомендуется использовать вакцины, содержащие один и тот же штамм вируса.
• Материнские антитела важны для защиты в течение первых недель жизни и могут препятствовать вакцинации. Было установлено, что средний период полувыведения материнских антител составляет 15 дней с сохранением их в крови до 10-14 недель (Johnson & Povey 1983). В ходе полевого исследования примерно у 20% котят 6-недельного возраста не было выявлено поддающихся обнаружению антител против широко используемого вакцинного штамма (Dawson et al. 2001). Материнские антитела меньше препятствуют иммунизации МЖВ вакцинами, вводящимися не инъекционно, а интраназально. Можно предположить, что интраназальные вакцины будут иммунизировать котят с материнскими антителами раньше, чем инъекционные.

Меры предосторожности
• Симптомы заболевания верхних дыхательных путей могут иногда наблюдаться как осложнение после интраназальной вакцинации (Lappin et al. 2006, 2009).
• Поскольку в полевых условиях циркулирует множество антигенно различающихся вирусов, для перекрестной защиты от тяжелых клинических проявлений болезни были выбраны сочетания вакцинных штаммов, тем не менее у вакцинированных кошек может наблюдаться заболевание в легкой форме.
• В отличие от FHV-1, который выделяется время от времени после провоцирующих стресс событий, выделение FCV происходит постоянно, но обычно прекращается через несколько месяцев (Coyne et al. 2006a). Влияние вакцинации на выделение вируса вызывает споры, а разброс данных исследований варьирует от умеренного укорочения до удлинения периода выделения вируса после болезни. Вакцинные штаммы FCV из живых инъекционных вакцин могут выделяться, хотя и не часто.

Сведения о болезни
• Заражение FCV может вызывать острые симптомы в ротовой полости и верхних дыхательных путях, но его связывают также с развитием хронических гингивостоматитов, которые могут быть иммуно-опосредованными.
• Инкубационный период составляет 2-10 дней. Основными симптомами являются образование язв в ротовой полости (особенно по краям языка), чихание и серозные истечения из носа. Острая симптоматика во рту и верхних дыхательных путях в основном наблюдается у котят.
• В редких случаях отмечался особый синдром, получивший название «вирулентный системный калицивироз» (virulent systemic feline calicivirus (VS-FCV) disease) (Coyne et al. 2006b). Инкубационный период для этого заболевания у кошек в приютах или больницах составляет 1-5 дней, в домашней обстановке он может длиться до 12 дней. Представляется, что взрослые кошки переносят болень тяжелее, чем котята. Вакцинация имеющимися на сегодняшний день вакцинами не защищает кошек от полевого заражения, но при экспериментальном заражении наблюдалась некоторая степень защиты (Poulet & Lemeter 2008, Huang et al. 2010). Это может быть обусловлено индивидуальными характеристиками гипервирулентных штаммов. Убитый штамм VS-FCV имеется в вакцине, доступной в США. Она содержит как «традиционный» изолят FCV, так и изолят VS-FCV, и, как сообщают, обеспечивает защиту против гомологичного VS-FCV (Huang et al. 2010). Неизвестно, будет ли этот штамм VS-FCV обеспечивать защиту против гетерологичных VS-FCV штаммов.

[vikidm]

Танюш, это ты мне на неделю задание дала изучить??? Класс!!
Короче, Савина ЮД мне запретила отныне прививать от калици Жорика (носителя калици), а т.к. без калици вакцин нет, то и нет.

[ingrid007]

Понятно, что она имеет пожизненный иммунитет к ПАН
Если ещё у кошки носительство калици (т.е. ТРИ раза подряд ежегодно ПЦР +), здесь стоит посоветоваться с врачом, т.к. в нобиваке все компаненты ЖИВЫЕ, а нам нужна на калици мёртвая (Пуревакс), но она с ПАН.

На вопросы ответил Пака Марк , ветеринарный врач, клиника ”Белый Клык”
http://zooforum.ru/index.php?showtopic=237...mp;#entry284785
Цитата(mark @ 24 Февраль 2013 - 10:19) *
первая вакцинация независимо от возраста рекомендована двукратная. квадрикат и квадрикат это нормально.

Извините, но:
1. Пожизненный иммунитет к панлейкопении - чушь, не надо мифов, реальность может быть страшной. Болеют и еще как. С положительным по пан ПЦРом прививать живой вакциной нельзя.
2. Если кошка здорова (после длительного карантина и т.д.) и только ПЦР по рино и калици выдает положительный результат, прививать живой вакциной рекомендуется, очень часто ПЦР начинает выдавать отрицательный результат, т.е. носительство уходит.
3. Доктора Пака, я смотрю, нисколько не напрягает, что в квадрикат включено бешенство? БК рулит, да.

[ficus]

Извините, но:
3. Доктора Пака, я смотрю, нисколько не напрягает, что в квадрикат включено бешенство? БК рулит, да.

В упаковке Квадриката вы найдете два флакона. В одном – жидкая вакцина «Корифелин», а в другом – сухая «Рабиффа-Фелиниффа».

[ficus]

name='ingrid007' date='15.6.2017, 14:55' post='12225075']
Извините, но:
1. Пожизненный иммунитет к панлейкопении - чушь, не надо мифов, реальность может быть страшной. Болеют и еще как. С положительным по пан ПЦРом прививать живой вакциной нельзя.

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

СПРАВОЧНЫЕ ДАННЫЕ: ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ПАРВОВИРУСА КОШЕК
(FELINE PARVOVIRUS (FPV) VACCINES)
Механизм действия и длительность иммунитета
После естественного инфицирования/переболевания длительность иммунитета пожизненная.
--
Было показано, что иммунитет после вакцинации убитыми вакцинами от панлейкопении
сохраняется не менее 7,5 лет (Scott & Geissinger 1999).
--
Хотя большинство случаев панлейкопении кошек вызывается заражением FPV, появились
варианты парвовируса собак (CPV-2a, CPV-2b и CPV-2c), которые инфицируют кошек и могут стать
причиной их болезни (Decaro & Buonavoglia 2012). Отдельные современные вакцины против FPV
предоставляют некоторую степень защиты против этих вариантов CPV.
--
Иммунитет к CPV-2 и FPV развивается уже через 3 дня и, если использовалась эффективная
МЖВ вакцина, на 5-й день он обычно уже сформирован. При использовании же убитых вакцин
против CPV-2 и FPV на выработку защитного иммунитета часто требуется 2-3 недели или больше.
Для правильно вакцинированных МЖВ вакцинами кошек процентная доля защищенных от
болезни и инфицирования FPV, по нашей оценке, также составляет ≥98%.
--
30. Правда ли, что лучше использовать вакцины, содержащие местные штаммы
возбудителей, чем международные вакцины?
Нет доказательств в пользу того, что международные базовые вакцины неспособны обеспечить
хорошую защиту против CDV, CAV-1, CAV-2, CPV-2, FPV, FCV, FHV-1 и вируса бешенства по
всему миру. В большинстве случаев видоизменение штаммов не затрагивает ключевые
протективные (защищающие) антигены, и такие антигены сохраняются среди всех штаммов
данного микроорганизма. А вот для бактерий рода Leptospira включение в вакцину дополнительных
серогрупп локального значения может привести к усилению защиты.
--
64. Принесет ли собаке или кошке пользу однократное введение вакцины? Принесет ли оно
пользу собачьей или кошачьей популяции?
Да. Даже однократное введение МЖВ базовой вакцины для собак (CDV, CPV-2, CAV-2) или МЖВ
вакцины против FPV для кошек должно обеспечить длительную иммунную защиту при введении
животным в возрасте 16 недель или старше. Каждый щенок и котенок в возрасте 16 недель или
старше должен получить как минимум одну дозу базовых МЖВ вакцин. В случае использования
базовых вакцин против респираторных инфекций кошек (FCV и FHV-1) защита будет усилена
введением двух доз вакцины с интервалом 2-4 недели.
--
68. Следует ли вакцинировать кошку, инфицированную FeLV и/или FIV?
Кошку, у которой выявлены FeLV или FIV, но нет клинических проявлений болезни, лучше держать
дома и не давать ей контактировать с другими кошками для снижения риска заражения
инфекционными болезнями. Но при необходимости ее вакцинации базовыми вакцинами (FPV, FCV
и FHV-1) в настоящее время экспертные группы рекомендуют применять убитые (а не МЖВ)
вакцины. Таких кошек не следует вакцинировать против FeLV и FIV.
--
77. Какой протокол рекомендуется для невакцинированной взрослой кошки?
Для взрослой кошки, которую никогда ранее не вакцинировали, группа VGG рекомендует базовую
вакцинацию двумя дозами МЖВ вакцины (FPV, FCV, FHV-1) плюс одну дозу вакцины от бешенства
на территориях, где оно является эндемичным (энзоотичным). Далее ревакцинацию (или
серологическое тестирование для FPV) следует проводить не чаще, чем один раз в 3 года, для кошек
с низким риском заражения или не чаще, чем один раз в 3 года, против FPV и ежегодно против FHV-
1 и FCV для кошек с высоким риском заражения. Дополнительные вакцины следует отбирать,
основываясь на анализе соотношения риска и пользы для каждого отдельно взятого животного.
--
85. Требуются ли более высокие титры антител для защиты от контрольного заражения
тяжелой болезнью животному, у которого закончена начальная серия вакцинации для
щенков/котят?
Для CDV, CAV-2, CPV-2 и FPV ответом будет «нет». Наличие антител (в каком бы то ни было титре)
указывает на то, что у этого животного есть защитный иммунитет и иммунологическая память.
Более частое введение животному вакцин в попытке увеличить титры антител – бессмысленное
занятие. Невозможно создать «больший иммунитет», пытаясь повысить титр антител.
--
Серопозитивных животных (имеющих антитела к CDV, CPV-2, FPV) ревакцинировать необязательно.
--
96. Есть ли собаки и кошки, у которых не развивается иммунный ответ при введении им
вакцин?
Да. Это генетическая черта встречающаяся, в частности, у некоторых пород. Таких животных
называют «не отвечающими на вакцинацию» (non-responder). Такое отсутствие иммунного ответа
часто бывает свойственно состоящим в родстве и поэтому генетически похожим животным (одна и
та же линия разведения или одна и та же порода). Если животное не отвечает на вакцинацию против
высокопатогенного агента, например, CPV или FPV, оно может погибнуть при заражении. Если же
животное не отвечает на вакцинацию против патогена, который редко вызывает смерть, оно может
переболеть, но выживет (например, после инфицирования Bordetella bronchiseptica).
--

Извините, но:
2. Если кошка здорова (после длительного карантина и т.д.) и только ПЦР по рино и калици выдает положительный результат, прививать живой вакциной рекомендуется, очень часто ПЦР начинает выдавать отрицательный результат,

А каким образом вакцина способна спровоцировать сильное воспаление?

http://www.abcdcatsvets.org/board-members/diane-addie/

Diane Addie
Diane Addie is a graduate of the University of Glasgow Veterinary School (GUVS). After 8 years in small animal practice, she returned to Glasgow to work on feline coronavirus (FCoV) and felineinfectious peritonitis (FIP) for her PhD. She hosts a website dedicated to providing veterinary surgeons with information which is difficult to access otherwise: www.catvirus.com and a You Tube channel. While interested in all infectious disease of the cat, her major research interests are FIP, feline chronic gingivostomatitis (FGS) and kitten mortality. Her dreams are the eradication of FCoV and FIP, to find a cure for FGS and to see an end of animal suffering within her lifetime

http://www.catvirus.com/stomatitis.html#Vaccination

Vaccination

While a cat has clinical signs of chronic gingivostomatitis, I do not recommend that he be vaccinated. After recovery, I used to recommend that the cat would not be vaccinated with a vaccine containing feline calicivirus (FCV), for fear that vaccination would cause return of clinical signs. However, when my own cat, Tommy, recovered I had to vaccinate him, because he had never been vaccinated and therefore was at risk from feline panleukopenia virus (feline parvovirus). Eliminating all vaccines which contained live FCV, I chose Purevax RCP by Merial to vaccinate him with. Happily he was absolutely fine - he has received his first course of two injections 3 weeks apart and a 3rd injection a year later and his mouth remains fine.

[ficus]

Извините, но:
1. Пожизненный иммунитет к панлейкопении - чушь, не надо мифов, реальность может быть страшной. Болеют и еще как.

Укажите пожалуйста, у каких врачей или в каких работах можно почитать или получить подтверждение тому, что вы пересказываете своими словами (ссылки на статьи или выписки из историй болезни с именами конкретных врачей, от которых вы узнали то, о чем сообщили).


В основе руководства - не мифы.

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

Anderson, T. C., Crawford, P. C., Dubovi, E. J. et al. (2013) Prevalence of and exposure factors for seropositivity to H3N8 canine influenza virus in dogs with influenza-like illness in the United States. Journal of the American Veterinary Medical Association 242, 209-216
Anon. (2013a) Survey suggests many pets do not receive preventive healthcare. Veterinary Record 172, 569
Anon. (2013b) WSAVA and OIE call for action on rabies. Veterinary Record 173, 463-464
Arjona, A., Barquero, N., Domenech, A et al. (2007) Evaluation of a novel nested PCR for the routine diagnosis of feline leukemia virus (FeLV) and feline immunodeficiency virus (FIV). Journal of Feline Medicine and Surgery 9, 14-22
AVSAB (American Veterinary Society of Animal Behavior) (2008) Position statement on puppy socialization. http://avsabonline.org/uploads/position_st...d_-_10-4-14.pdf
Bande, F., Arshad, S. S., Hassan, L. et al. (2012) Prevalence and risk factors of feline leukaemia virus and feline immunodeficiency virus in peninsular Malaysia. BMC Veterinary Research 8, 33
Bandecchi, P., Matteucci, D., Baldinotti, F. et al. (1992) Prevalence of feline immunodeficiency virus and other retroviral infections in sick cats in Italy. Veterinary Immunology and Immunopathology 31, 337-345
Beczkowski, P. M., Harris, M., Techakriengkrai, N. et al. (2015a) Neutralising antibody response in domestic cats immunised with a commercial feline immunodeficiency virus (FIV) vaccine. Vaccine 33, 977-984
Beczkowski, P. M., Litster, A., Lin, T. L. et al. (2015b) Contrasting clinical outcomes in two cohorts of cats naturally infected with feline immunodeficiency virus (FIV). Veterinary Microbiology 176, 50-60
Bennett, M., McCracken, C., Lutz, H. et al. (1989) Prevalence of antibody to feline immunodeficiency virus in some cat populations. Veterinary Record 124, 397-398
Bergman, P.J., Camps-Palau, M.A., McKnight, J.A. et al. (2006) Development of a xenogeneic DNA vaccine program for canine malignant melanoma at the Animal Medical Centre. Vaccine 24, 4582-4585
Bohm, M., Thompson, H., Weir, A. et al. (2004) Serum antibody titres to canine parvovirus, adenovirus and distemper virus in dogs in the UK which had not been vaccinated for at least three years. Veterinary Record 154, 457-463
Bongiorno, G., Paparcone, R., Foglia Manzillo, V. et al. (2013) Vaccination with LiESP/QA-21 (CaniLeish®) reduces the intensity of infection in Phlebotomus perniciosus fed on Leishmania infantum infected dogs – a preliminary xenodiagnosis study. Veterinary Parasitology 197, 691-695
Bragg, R. F., Duffy, A. L., DeCecco, F. A. et al. (2012) Clinical evaluation of a single dose of immune plasma for treatment of canine parvovirus infection. Journal of the American Veterinary Medical Association 240, 700-704
Brun, A., Chappuis G., Precausta, P. et al. (1979) Immunisation against panleukopenia: early development of immunity. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases 1, 335-339
Buonavoglia, C., Decaro, N., Martella, V. et al. (2006) Canine coronavirus highly pathogenic for dogs. Emerging Infectious Diseases 12 492-494
Carpenter, J. W., Appel, M. J., Erickson, R. C. & Novilla, M. N. (1976) Fatal vaccine-induced canine distemper virus infection in black-footed ferrets. Journal of the American Veterinary Medical Association 169, 961-964
Castleman, W. L., Powe, J. R., Crawford, P. C. et al. (2010) Canine H3N8 influenza virus infection in dogs and mice. Veterinary Pathology 47, 507-517
Chang Fung Martel, J., Gummow, B., Burgess, G. et al. (2013) A door-to-door prevalence study of feline immunodeficiency virus in Australia. Journal of Feline Medicine and Surgery 15, 1070-1078
Coleman, J. K., Pu, R., Martin, M. M. et al. (2014) Feline immunodeficiency virus (FIV) vaccine efficacy and FIV neutralizing antibodies. Vaccine 32, 746-754
Connolly, M., Thomas, P., Woodroffe, R. & Raphael, B. L. (2013) Comparison of oral and intramuscular recombinant canine distemper vaccination in African wild dogs (Lycaon pictus). Journal of Zoo and Wildlife Medicine 44, 882-888
Coyne, K. P., Dawson, S., Radford, A. D. et al. (2006a) Long-term analysis of feline calicivirus prevalence and viral shedding patterns in naturally infected colonies of domestic cats. Veterinary Microbiology 118, 12-25
Coyne, K. P., Jones, B. R., Kipar, A. et al. (2006b) Lethal outbreak of disease associated with feline calicivirus infection in cats. Veterinary Record 158, 544-550
Crawford, P. C., Dubovi, E. J., Castleman, W. L. et al. (2005) Transmission of equine influenza virus to dogs. Science 310, 482-485
Curtis, R. & Barnett, K. C. (1983) The ‘blue eye’ phenomenon. Veterinary Record 112, 347-353
Daly, J. M., Blunden, A. S., Macrae, S. et al. (2008) Transmission of equine influenza virus to English foxhounds. Emerging Infectious Disease 14, 461-464
Dawson, S., Willoughby, K., Gaskell, R. M. et al. (2001) A field trial to assess the effect of vaccination against feline herpesvirus, feline calicivirus and feline panleukopenia virus in 6-week-old kittens. Journal of Feline Medicine and Surgery 3, 17-22
Day, M. J. (2010a) Ageing, immunosenescence and inflammageing in the dog and cat. Journal of Comparative Pathology 142 (Suppl. 1), S60-S69
Day, M. J. (2010b) One health: the small companion animal dimension. Veterinary Record 167, 847-849
Day, M. J., Breitschwerdt, E., Cleaveland, S. et al. (2012) Surveillance of zoonotic infectious diseases transmitted by small companion animals. Emerging Infectious Diseases DOI: 10.3201/eid1812.120664
Day, M. J., Horzinek, M. & Schultz, R. D. (2007) Guidelines for the vaccination of dogs and cats. Journal of Small Animal Practice 48, 528-541
Day, M. J., Horzinek, M. & Schultz, R. D. (2010) Guidelines for the vaccination of dogs and cats. Journal of Small Animal Practice 51, 338-356
Day, M. J., Schoon, H.-A., Magnol, J.-P. et al. (2007) A kinetic study of histopathological changes in the subcutis of cats injected with non-adjuvanted and adjuvanted multi-component vaccines. Vaccine 25, 4073-4084
Day, M. J. & Schultz, R. D. (2014) Vaccination. In: Veterinary Immunology: Principles and Practice, Taylor and Francis, Boca Raton, p. 224
Dean, R. S., Pfeiffer, D. U. & Adams, V. J. (2013) The incidence of feline injection site sarcomas in the United Kingdom. BMC Veterinary Research 9, 17
Decaro, N. & Buonavoglia, C. (2012) Canine parvovirus – a review of epidemiological and diagnostic aspects with emphasis on type 2c. Veterinary Microbiology 155, 1-12
Decaro, N., Crescenzo, G., Desario, C. et al. (2014) Long-term viraemia and fecal shedding in pups after modified-live canine parvovirus vaccination. Vaccine 32, 3850-3853
Decaro, N., Desario, C. Elia, G. et al. (2008) Evidence for immunisation failure in vaccinated adult dogs infected with canine parvovirus type 2c. New Microbiology 31, 125-130
Decaro, N., Mari, V., Campolo, M. et al. (2009) Recombinant canine coronaviruses related to transmissible gastroenteritis of swine are circulating in dogs. Journal of Virology 83, 1532-1537
Deshpande, M. S., Jirjis, F. F., Tubbs, A. L. et al. (2009) Evaluation of the efficacy of a canine influenza virus (H3N8) vaccine in dogs following experimental challenge. Veterinary Therapeutics 10, 103-112
DiGangi, B. A., Gray, L. K., Levy, J. K. et al. (2011) Detection of protective antibody titers against feline panleukopenia virus, feline herpesvirus-1, and feline calicivirus in shelter cats using a point-of-care ELISA. Journal of Feline Medicine and Surgery 13, 912-918
DiGangi, B. A., Levy, J. K., Griffin, B. et al. (2011) Effects of maternally-derived antibodies on serologic responses to vaccination in kittens. Journal of Feline Medicine and Surgery 14, 118-123
DiGangi, B. A., Levy, J. K., Griffin, B. et al. (2012) Prevalence of serum antibody titers against feline panleukopenia virus, feline herpesvirus 1, and feline calicivirus in cats entering a Florida animal shelter. Journal of the American Veterinary Medical Association 241, 1320-1325
Dodds, W. J. (2012) Immune plasma for treatment of parvoviral gastroenteritis. Journal of the American Veterinary Medical Association 240, 1056
Dunham, S. P., Bruce, J., MacKay, S. et al. (2006) Limited efficacy of an inactivated feline immunodeficiency virus vaccine. Veterinary Record 158, 561-562
Durchfeld, B., Baumgartner, W., Herbst, W. & Brahm, R. (1990) Vaccine-associated canine distemper infection in a litter of African hunting dogs (Lycaon pictus). Zentralbl Veterinarmed B 37, 203-212
Ellis, J. A. (2015) How well do vaccines for Bordetella bronchiseptica work in dogs? A critical review of the literature 1977-2014. Veterinary Journal 204, 5-16
Ellis, J. A. & Krakowka, G. S. (2012) A review of canine parainfluenza virus infection in dogs. Journal of the American Veterinary Medical Association 240, 273-284
Espinal, M. A., Diaz, F. J. & Ruiz-Saenz, J. (2014) Phylogenetic evidence of a new canine distemper virus lineage among domestic dogs in Colombia, South America. Veterinary Microbiology 172, 168-176
Fernandes, C. B., Torres Magalhaes Jr, J., de Jesus, C. et al. (2104) Comparison of two commercial vaccines against visceral leishmaniasis in dogs from endemic areas: IgG, and subclasses, parasitism, and parasite transmission by xenodiagnosis. Vaccine 32, 1287-1295
Fischer, S. M., Quest, C. M., Dubovi, E. J. et al. (2007) Response of feral cats to vaccination at the time of neutering. Journal of the American Veterinary Medical Association 230, 52-58
Friedrich, K. & Truyen, U. (2000) Untersuchung der wirksamkeit von parvovirussimpfstoffen und der effektivitat zweier impfschemata. Praktischer Tierarzt 81, 988-994
Friend, S. C., Birch, C. J., Lording, P. M. et al. (1990) Feline immunodeficiency virus: prevalence, disease associations and isolation. Australian Veterinary Journal 67, 237-243
Gaskell, R., Dawson, S., Radford, A. & Thiry, E. (2007) Feline herpesvirus. Veterinary Research 38, 337-354
Gibbs, E. P. J. (2014) The evolution of One Health: a decade of progress and challenges for the future. Veterinary Record 174, 85-91
Gleich, S. E., Krieger, S. & Hartmann, K. (2009) Prevalence of feline immunodeficiency virus and feline leukaemia virus among client-owned cats and risk factors for infection in Germany. Journal of Feline Medicine and Surgery 11, 985-992
Glennon, P. J., Cockburn, T. & Stark, D. M. (1991) Prevalence of feline immunodeficiency virus and feline leukemia virus infections in random-source cats. Laboratory Animal Science 41, 545-547
Gobar, G. M. & Kass, P. H. (2002) World Wide Web-based survey of vaccination practices, postvaccinal reactions, and vaccine site-associated sarcomas in cats. Journal of the American Veterinary Medical Association 220, 1477-1482
Gordon, J. C. & Angrick, E. J. (1986) Canine parvovirus: environmental effects on infectivity. American Journal of Veterinary Research 47, 1464-1467
Gray, L. K., Crawford, P. C., Levy, J. K. et al. (2012) Comparison of two assays for detection of antibodies against canine parvovirus and canine distemper virus in dogs admitted to a Florida animal shelter. Journal of the American Veterinary Medical Association 240, 1084-1087
Grosenbaugh, D. A., Leard, A. T., Bergman, P. J. et al. (2011) Safety and efficacy of a xenogeneic DNA vaccine encoding for human tyrosinase as adjunctive treatment for oral malignant melanoma in dogs following surgical excision of the primary tumor. American Journal of Veterinary Research 72, 1631-1638
Hartman, E. G., van Houten, M., Frik, J. F. & van der Donk, J. A. (1984) Humoral immune response of dogs after vaccination against leptospirosis measured by an IgM- and IgG-specific ELISA. Veterinary Immunology and Immunopathology 7, 245-254
Hartmann, K., Day, M. J., Thiry, E., Lloret, A., Frymus, T., Addie, D., Boucraut-Baralon, C., Egberink, H., Gruffydd-Jones, T., Horzinek, M. C., Hosie, M. J., Lutz, H., Marsilio, F., Grazia Pennisi, M., Radford A. D., Truyen, U. & Mostl, K. (2015) Feline injection site sarcoma: ABCD guidelines on prevention and management. Journal of Feline Medicine and Surgery 17, 606-613.
Hendricks, C. G., Levy, J. K., Tucker, S. J. et al. (2014) Tail vaccination in cats: a pilot study. Journal of Feline Medicine and Surgery 16, 275-280
Hess, T. J., Parker, D. S., Hassall, A. J. & Chiang, Y. W. (2011) Evaluation of efficacy of oral administration of Bordetella intranasal vaccine when used to protect puppies from tracheobronchitis due to B. Bronchiseptica infection. International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine 9, 301-305
Hitt, M. E., Spangler, L. & McCarville, C. (1992) Prevalence of feline immunodeficiency virus in submissions of feline serum to a diagnostic laboratory in Atlantic Canada. Canadian Veterinary Journal 33, 723-726
Hoare, C. M., DeBouck, P. & Wiseman, A. (1997) Immuonogenicity of a low-passage, high-titer modified live canine parvovirus vaccine in pups with maternally derived antibodies. Vaccine 15, 273-275
Hofmann-Lehmann, R., Fehr, D., Grob, M. et al. (1996) Prevalence of antibodies to feline parvovirus, calicivirus, herpesvirus, coronavirus, and immunodeficiency virus and of feline leukemia virus antigen and the interrelationship of these viral infections in free-ranging lions in east Africa. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology 3, 554-562
Horzinek, M. C. (2010) Vaccination protocols for companion animals: the veterinarian's perspective. Journal of Comparative Pathology 142 (Suppl. 1), S129-S132
Hosie, M. J., Addie, D., Belak, S. et al. (2013) Matrix vaccination guidelines: ABCD recommendations for indoor/outdoor cats, rescue shelter cats and breeding catteries. Journal of Feline Medicine and Surgery 15, 540-544
Hosie, M. J. & Beatty, J. A. (2007) Vaccine protection against feline immunodeficiency virus: setting the challenge. Australian Veterinary Journal 85, 5-12
Hosie, M. J., Osborne, R., Yamamoto, J. K. et al. (1995) Protection against homologous but not heterologous challenge induced by inactivated feline immunodeficiency virus vaccines. Journal of Virology 69, 1253-1255
Hosie, M. J., Robertson, C. & Jarrett, O. (1989) Prevalence of feline leukaemia virus and antibodies to feline immunodeficiency virus in cats in the United Kingdom. Veterinary Record 125, 293-297
Houston, D. M., Ribble, C. S. & Head, L. L. (1996) Risk factors associated with parvovirus enteritis in dogs: 283 cases (1982-1991). Journal of the American Veterinary Medical Association 208, 542-546
Huang, C., Hess, J., Gill, M. et al. (2010) A dual-strain feline calicivirus vaccine stimulates broader cross-neutralization antibodies than a single-strain vaccine and lessens clinical signs in vaccinated cats when challenged with a homologous feline calicivirus strain associated with virulent systemic disease. Journal of Feline Medicine and Surgery 12, 129-137
Jakel, V., Cussler, K., Hanschmann, K. M. et al. (2012) Vaccination against feline panleukopenia: implications from a field study in kittens. BMC Veterinary Research 8, 62
Jas, D., Coupier, C., Edlund Toulemonde, E. et al. (2012) Three-year duration of immunity in cats vaccinated with a canarypox-vectored recombinant rabies virus vaccine. Vaccine 30, 6991-6996
Jas, D., Frances-Duvert, V., Vernes, D. et al. (2015) Three-year duration of immunity for feline herpesvirus and calicivirus evaluated in a controlled vaccination-challenge laboratory trial. Veterinary Microbiology 177, 123-131
Johnson, R. P. & Povey, R. C. (1983) Transfer and decline of maternal antibody to feline calicivirus. Canadian Veterinary Journal 24, 6-9
Jones, B. R., Hodge, H. & Davies, E. (1995) The prevalence of feline immunodeficiency virus infection in hyperthyroid cats. New Zealand Veterinary Journal 43, 23-24
Kapil, S., Allison, R. W., Johnston III, L. et al. (2008) Canine distemper virus strains circulating among North American dogs. Clinical and Vaccine Immunology 15, 707-712
Kass, P. H., Barnes, W. G., Jr., Spangler, W. L. et al. (1993) Epidemiologic evidence for a causal relation between vaccination and fibrosarcoma tumorigenesis in cats. Journal of the American Veterinary Medical Association 203, 396-405
Kennedy, L. J., Lunt, M., Barnes, A. et al. (2007) Factors influencing the antibody response of dogs vaccinated against rabies. Vaccine 25, 8500-8507
Kirkland, P. D., Finlaison, D. S., Crispe, E. & Hurt, A. C. (2010) Influenza virus transmission from horses to dogs, Australia. Emerging Infectious Diseases 16, 699-702
Klaasen, H. L., Molkenboer, M. J., Vrijenhoek, M. P. & Kaashoek, M. J. (2003) Duration of immunity in dogs vaccinated against leptospirosis with a bivalent inactivated vaccine. Veterinary Microbiology 95, 121-132
Klassen, H. L. B. M., van der Veen, M., Molkenboer M. J. C. H. et al. (2012) A novel tetravalent Leptospira bacterin protects against infection and shedding following challenge in dogs. Veterinary Record 172, 181
Klaasen, H. L. B. M., van der Veen, M., Sutton, D. et al. (2014) A new tetravalent canine leptospirosis vaccine provides at least 12 months immunity against infection. Veterinary Immunology and Immunopathology 158, 26-29
Korbelik, J., Rand, J. S. & Morton, J. M. (2011) Comparison of early socialization practices used for litters of small-scale registered dog breeders and nonregistered dogs breeders. Journal of the American Veterinary Medical Association 239, 1090-1097
Kusuhara, H., Hohdatsu, T., Seta, T. et al. (2007) Serological differentiation of FIV-infected cats from dual-subtype feline immunodeficiency virus vaccine (Fel-O-Vax FIV) inoculated cats. Veterinary Microbiology 120, 217-225
Ladlow, J. (2013) Injection site-associated sarcoma in the cat: treatment recommendations and results to date. Journal of Feline Medicine and Surgery 15, 409-418
Lappin, M. R. (2012) Feline panleukopenia virus, feline herpesvirus-1 and feline calicivirus antibody responses in seronegative specific pathogen-free kittens after parenteral administration of an inactivated FVRCP vaccine or a modified live FVRCP vaccine. Journal of Feline Medicine and Surgery 14, 161-164
Lappin, M. R., Andrews, J., Simpson, D. & Jensen, W. A. (2002) Use of serologic tests to predict resistance to feline herpesvirus 1, feline calicivirus, and feline parvovirus infection in cats. Journal of the American Veterinary Medical Association 220, 38-42
Lappin, M. R., Sebring, R. W., Porter, M. et al. (2006) Effects of a single dose of an intranasal feline herpesvirus 1, calicivirus, and panleukopenia vaccine on clinical signs and virus shedding after challenge with virulent feline herpesvirus 1. Journal of Feline Medicine and Surgery 8, 158-163
Lappin, M. R., Veir, J. Hawley, J. (2009) Feline panleukopenia virus, feline herpesvirus-1, and feline calicivirus antibody responses in seronegative specific pathogen-free cats after a single administration of two different modified live FVRCP vaccines. Journal of Feline Medicine and Surgery 11, 159-162
Larson, L. J., Henningson, J., Sharp, P. et al. (2011) Efficacy of the canine influenza virus H3N8 vaccine to decrease severity of clinical disease after co-challenge with canine influenza virus and Streptococcus equi subsp. zooepidemicus. Clinical and Vaccine Immunology 18, 559-564
Larson, L. J. & Schultz, R. D. (2006) Effect of vaccination with recombinant canine distemper virus vaccine immediately before exposure under shelter-like conditions. Veterinary Therapeutics 7, 113-118
Lee, I. T., Levy, J. K., Gorman, S. P. et al. (2002) Prevalence of feline leukemia virus infection and serum antibodies against feline immunodeficiency virus in unowned free-roaming cats. Journal of the American Veterinary Medical Association 220, 620-622
Lechner, E. S., Crawford, P. C., Levy, J. K. et al. (2010) Prevalence of protective antibody titers for canine distemper virus and canine parvovirus in dogs entering a Florida animal shelter. Journal of the American Veterinary Medical Association 236, 1317-1321
Levy, J. K., Crawford, P. C., Kusuhara, H. et al. (2008) Differentiation of feline immunodeficiency virus vaccination, infection, or vaccination and infection in cats. Journal of Veterinary Internal Medicine 22, 330-334
Litster, A., Nichols, J. & Volpe, A. (2012) Prevalence of positive antibody test results for canine parvovirus (CPV) and canine distemper virus (CDV) and response to modified live vaccination against CPV and CDV in dogs entering animal shelters. Veterinary Microbiology 157, 86-90
Lloret, A. (2009) The process of evidence-based medicine. Journal of Feline Medicine and Surgery 11, 529
Maes, R. (2012) Felid herpesvirus type 1 infection in cats: a natural host model for alphaherpesvirus pathogenesis. ISRN Veterinary Science 2012, 495830
Martano, M., Morello, E. & Buracco, P. (2011) Feline injection-site sarcoma: past, present and future perspectives. Veterinary Journal 188, 136-141
Martin, L. E. R., Wiggans, K. T., Wennogle, S. A. et al. (2014) Vaccine-associated Leptospira antibodies in client-owned dogs. Journal of Veterinary Internal Medicine 28, 789-792
Meichner, K., Kruse, D. B., Hirschberger, J. & Hartmann, K. (2012) Changes in prevalence of progressive feline leukaemia virus infection in cats with lymphoma in Germany. Veterinary Record 171, 348
Mende, K., Stuetzer, B., Truyen, U. et al. (2014) Evaluation of an in-house dot enzyme-linked immunosorbent assay to detect antibodies against feline panleukopenia virus. Journal of Feline Medicine and Surgery, in press
Mitchell, S. A., Zwijnenberg, R. J., Huang, J. et al. (2012) Duration of serological response to canine parvovirus-type 2, canine distemper virus, canine adenovirus-type 1 and canine parainfluenza virus in client-owned dogs in Australia. Australian Veterinary Journal 90, 468-473
Miyaji, K., Suzuki, A., Shimakura, H. et al. (2012) Large-scale survey of adverse reactions to canine non-rabies combined vaccines in Japan. Veterinary Immunology and Immunopathology 145, 447-452
Moore, G. E., Guptill, L. F., Ward, M. P. et al. (2005) Adverse events diagnosed within three days of vaccine administration in dogs. Journal of the American Veterinary Medical Association 227, 1102-1108
Moore, G. E., DeSantis-Kerr, A. C., Guptill, L. F. et al. (2007) Adverse events after vaccine administration in cats: 2560 cases (2002-2005). Journal of the American Veterinary Medical Association 231, 94-100
Moreno, J., Vouldoukis, I., Schreiber, P. et al. (2014) Primary vaccination with the LiESP/QA-21 vaccine (CaniLeish®) produces a cell-mediated immune response which is still present 1 year later. Veterinary Immunology and Immunopathology 158, 199-207
Morton, J. M., McCoy, R. J., Kann, R. K. et al. (2012) Validation of real-time polymerase chain reaction tests for diagnosing feline immunodeficiency virus infection in domestic cats using Bayesian latent class models. Preventive Veterinary Medicine 104, 136-148
Mouzin, D. E., Lorenzen, M. J., Haworth, J. D. & King, V. L. (2004) Duration of serologic response to five viral antigens in dogs. Journal of the American Veterinary Medical Association 224, 55-60
Muirden, A. (2002) Prevalence of feline leukaemia virus and antibodies to feline immunodeficiency virus and feline coronavirus in stray cats sent to an RSPCA hospital. Veterinary Record 150, 621-625
Norris, J. M., Bell, E. T., Hales, L. et al. (2007) Prevalence of feline immunodeficiency virus infection in domesticated and feral cats in eastern Australia. Journal of Feline Medicine and Surgery 9, 300-308
Ohneiser, S. A., Hills, S. F., Cave, N. J. et al. (2015) Canine parvoviruses in New Zealand form a monophyletic group distinct from the viruses circulating in other parts of the world. Veterinary Microbiology (in press).
Ottnod, J. M., Smedley, R. C., Walshaw, R. et al. (2013) A retrospective analysis of the efficacy of Oncept vaccine for the adjunct treatment of canine oral malignant melanoma. Veterinary and Comparative Oncology 11, 219-229
Palatnik-de-Sousa, C.B. & Day, M. J. (2011) One health: the global challenge of epidemic and endemic leishmaniasis. Parasites and Vectors 4,197
Palatnik-de-Sousa, C.B., Silva-Antunes, I., de Aguiar Morgado, A. et al. (2009) Decrease of the incidence of human and canine visceral leishmaniasis after dog vaccination with Leishmune® in Brazilian endemic areas. Vaccine 27, 3505-3512
Payungporn, S., Crawford, P. C., Kouo, T. S. et al. (2008) Influenza A virus (H3N8) in dogs with respiratory disease, Florida. Emerging Infectious Diseases 14, 902-908
Pearson, G. L. (1977) Vaccine-induced canine distemper virus in black-footed ferrets. Journal of the American Veterinary Medical Association 170, 103-109
Pedersen, N. C., Elliott, J. B., Glasgow, A. et al. (2000) An isolated epizootic of hemorrhagic-like fever in cats caused by a novel and highly virulent strain of feline calicivirus. Veterinary Microbiology 73, 281-300
Pollock, R. V. & Carmichael, L. E. (1982a) Maternally derived immunity to canine parvovirus infection: transfer, decline, and interference with vaccination. Journal of the American Veterinary Medical Association 180, 37-42
Pollock, R. V. & Carmichael, L. E. (1982b) Dog response to inactivated canine parvovirus and feline panleukopenia virus vaccines. Cornell Veterinarian 72, 16-35
Poulet, H., Brunet, S., Leroy, V. et al. (2005) Immunisation with a combination of two complementary feline calicivirus strains induces a broad cross-protection against heterologous challenges. Veterinary Microbiology 106, 17-31
Poulet, H., Jas, D., Lemeter, C. et al. (2008) Efficacy of a bivalent inactivated non-adjuvanted feline calicivirus vaccine: relation between in vitro cross-neutralization and heterologous protection in vivo. Vaccine 26, 3647-3654
Pratelli, A. & Colao, V. (2014) A population prevalence study on influenza infection in dogs in Southern Italy. New Microbiologica 37, 277-283
Ravi, M., Wobeser, G. A., Taylor, S. M. & Jackson, M. L. (2010) Naturally acquired feline immunodeficiency virus (FIV) infection in cats from western Canada: prevalence, disease associations, and survival analysis. Canadian Veterinary Journal 51, 271-276
Reagan, K. L., Hawley, J. R. & Lappin, M. R. (2014) Concurrent administration of an intranasal vaccine containing feline herpesvirus-1 (FHV-1) with a parenteral vaccine containing FHV-1 is superior to parenteral vaccination alone in an acute FHV-1 challenge model. Veterinary Journal 201, 202-206
Richter, M., Schudel, L., Tobler, K. et al. (2009) Clinical, virological, and immunological parameters associated with superinfection of latently with FeHV-1 infected cats. Veterinary Microbiology 138, 205-216
Roberts, E. S., VanLare, K. A., Roycroft, L. M. & King, S. (2015) Effect of high-dose ciclosporin on the immune response to primary and booster vaccination in immunocompetent cats. Journal of Feline Medicine and Surgery 17, 101-109
Rypula, K., Ploneczka-Janeczko, K., Bierowiec, K. et al. (2014) Prevalence of viral infections in cats in southwestern Poland in the years 2006 to 2010. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 127, 163-165
Sachse, K., Bavoil, P. M., Kaltenboeck, B. et al. (2015) Emendation of the family Chlamydiaceae: proposal of a single genus, Chlamydia to include all currently recognized species. Systemic and Applied Microbiology 38, 99-103
Schorr-Evans, E. M., Poland, A., Johnson, W. E. & Pedersen, N. C. (2003) An epizootic of highly virulent feline calicivirus disease in a hospital setting in New England. Journal of Feline Medicine and Surgery 5, 217-226
Schulz, B., Klinkenberg, C., Fux, R. et al. (2014) Prevalence of canine influenza virus A (H3N8) in dogs in Germany. Veterinary Journal 202, 184-185
Schultz, R. D. (2006) Duration of immunity for canine and feline vaccines: a review. Veterinary Microbiology 117, 75-79
Schultz, R. D. (2009) A commentary on parvovirus vaccination. Journal of Feline Medicine and Surgery 11, 163-164
Schultz, R. D. & Larson, L. J. (1996) The new generation of parvovirus vaccines. A comparison study. Compendium of Continuing Education for the Practicing Veterinarian 18, 640-641
Schultz, R. D., Thiel, B., Mukhtar, E. et al. (2010) Age and long-term protective immunity in dogs and cats. Journal of Comparative Pathology 142 (Suppl. 1), S102-S108
Scott, F. W. & Geissinger, C. M. (1997) Duration of immunity in cats vaccinated with an inactivated feline panleukopenia, herpesvirus and calicivirus vaccine. Feline Practice 25, 12-19
Scott, F. W. & Geissinger, C. M. (1999) Long-term immunity in cats vaccinated with an inactivated trivalent vaccine. American Journal of Veterinary Research 60, 652-658
Scherk, M. A., Ford, R. B., Gaskell, R. M. et al. (2013) 2013 AAFP Feline Vaccination Advisory Panel report. Journal of Feline Medicine and Surgery 15, 785-808
Schuller, S., Francey, T., Hartmann, K. et al. (2015) European consensus statement on leptospirosis in dogs and cats. Journal of Small Animal Practice 56, 159-179
Shaw, S. C., Kent, M. S., Gordon, I. K. et al. (2009) Temporal changes in characteristics of injection-site sarcomas in cats: 392 cases (1990-2006). Journal of the American Veterinary Medical Association 234, 376-380
Spibey, N., Greenwood, N. M., Sutton, D. et al. (2008) Canine parvovirus type 2 vaccine protects against virulent challenge with type 2c virus. Veterinary Microbiology 128, 48-55
Srivastav, A., Kass, P. H., McGill, L. D. et al. (2012) Comparative vaccine-specific and other injectable-specific risks of injection-site sarcomas in cats. Journal of the American Veterinary Medical Association 241, 595-602
Stepita, M. E., Bain, M. J. & Kass, P. H. (2013) Frequency of CPV infection in vaccinated puppies that attended puppy socialization classes. Journal of the American Animal Hospital Association 49, 95-100
Strasser, A., May, B., Teltscher, A. et al. (2003) Immune modulation following immunization with polyvalent vaccines in dogs. Veterinary Immunology and Immunopathology 94, 113-121
Thiry, E. & Horzinek, M. C. (2007) Vaccination guidelines: a bridge between official requirements and the daily use of vaccines. Revue Scientifique et Technique de l'Office International des Йpizooties 26, 511-517
Ueland, K. & Lutz, H. (1992) Prevalence of feline leukemia virus and antibodies to feline immunodeficiency virus in cats in Norway. Zentralblatt fьr Veterinдrmedizin. Reihe B. Journal of Veterinary Medicine. Series B 39, 53-58
Wang, C., Johnson, C. M., Ahluwalia, S. K. et al. (2010) Dual-emission fluorescence resonance energy transfer (FRET) real-time PCR differentiates feline immunodeficiency virus subtypes and discriminates infected from vaccinated cats. Journal of Clinical Microbiology 48, 1667-1672
Weijer, K. & Daams, J. H. (1976) The presence of leukaemia (lymphosarcoma) and feline leukaemia virus (FeLV) in cats in The Netherlands. Journal of Small Animal Practice 17, 649-659
Weijer, K., UijtdeHaag, F. & Osterhaus, A. (1986) Control of feline leukaemia virus infection by a removal programme. Veterinary Record 119, 555-556
Weijer, K., Uytdehaag, F. G. & Osterhaus, A. D. (1989) Control of feline leukaemia virus. Veterinary Immunology and Immunopathology 21, 69-83
Welborn, L. V., DeVries, J. G., Ford, R. et al. (2011) 2011 AAHA canine vaccination guidelines. Journal of the American Animal Hospital Association 47, 1-42
Westman, M. E., Malik, R., Hall, E. et al. (2015) Determining the feline immunodeficiency virus (FIV) status of FIV-vaccinated cats using point-of-care antibody kits. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases http://dx.doi.org/10.1016/j.cimid.2015.07.004
Wilson, S., Stirling, C., Borowski S. et al. (2013) Vaccination of dogs with Duramune DAPPi+LC protects against pathogenic canine parvovirus type 2c challenge. Veterinary Record 172, 662
Wilson, S., Stirling, C., Thomas, A. et al. (2013) Duration of immunity of a multivalent (DHPPi/L4R) canine vaccine against four Leptospira serovars. Vaccine 31, 3126-3130
Yamamoto, J. K., Pu, R., Sato, E. & Hohdatsu, T. (2007) Feline immunodeficiency virus pathogenesis and development of a dual-subtype feline-immunodeficiency-virus vaccine. AIDS 21, 547-563
Yilmaz, H., Ilgaz, A. & Harbour, D. A. (2000) Prevalence of FIV and FeLV infections in cats in Istanbul. Journal of Feline Medicine and Surgery 2, 69-70

[vikidm]

Я для СЕБЯ РЕШИЛА, пообщавшись с врачами, к. хоть как-то интересуются проблемой, выезжают за рубеж за повышением квалификации, а тем более читают сами Лекции,
ЧТО:
- ПЕРЕБОЛЕВШИЕ ПАН - иммунитет пожизненный- не требует вакцинации.
а вот выделяют ли они вирус- через три года после перенесенного заболевания достаточно пересдать ректальный ПЦР, и тогда кошка не представляет опасности для других.
- ПЕРЕБОЛЕВШИЕ РИНО- НОСИТЕЛЬСТВО ПОЖИЗНЕННО- вакцинация от рино запрещена
- ПЕРЕБОЛЕВШИЕ КАЛИЦИ- НОСИТЕЛЬСТВО ПОЖИЗНЕННОЕ (ДО 90%) - вакцинация от калици запрещена (тем более при ГИСТОЛОГИИ- лимф.-плазмоц.стоматит/гингивит)
- НОСИТЕЛИ КОРОНОВИРУСА (а их домашних выше 60%)- вакцинация от ПАН запрещена! от себя- по титрам свыше 1:160

-Вакцина ПАН держит у Нобивак и Мериал от 3 до 5 лет как минимум- вакцинируем раз 3-5 лет.
-Вакцина рино/калици до года.
если в многодетной семье есть носители, значит прививаем только остальных от ТЕХ вирусов.
нет отдельно вакцины на запрещенную- значит не прививаем СОВСЕМ.
ЧТО ТАКОЕ НОСИТЕЛЬСТВО- в течение ТРЁХ ЛЕТ- ТРИ анализа ПЦР положительны!

Клиники настоятельно требуют вакцинации всех поголовно в ущерб здоровью животных, т.к. страхуются от вспышек эпидемий у себя в клинике, не уверены в 100% безопасности содержания
вирусных стационаров, Витафел за границей больше НЕ ИСПОЛЬЗУЮТ.
А что же делать, если кот не привит, а в клинику нужно.....не знаю! сидеть за километр от других.....
Если б да кабы, во рту росли грибы....подальше от больных......

Я это всё написала в расчете на постоянный прайд 3-5-7 кошек. и БОЛЬШЕ СТРОГО НИКОГО НЕ ПРИВОДИТЬ!!!!!!!!

ЕСЛИ ЭТО ПЕРЕДЕРЖКА- ТО ВСЁ МЕНЯЕТСЯ КООРДИНАЛЬНО - ВЫХОД ОДИН- ПРИВИВАТЬ ВСЕХ И ОТ ВСЕГО. Изменено 15 июня, 2017 пользователем vikidm

[ficus]

Витафел за границей больше НЕ ИСПОЛЬЗУЮТ.

И никогда не использовали, это отечественный препарат, у нас его запретил Россельхознадзор,
http://pesikot.org/forum/index.php?showtopic=300065&hl=
и другие нашего производства сыворотки и глобулины не эффективны.

[ingrid007]

Инструкция на оф. сайте http://www.merial.ru/Cat/ProductList/Pages/Quadricat.aspx

Лекарственная форма - лиофилизированная таблетка и жидкий компонент (сухая масса и жидкость) для приготовления эмульсии для инъекций.
Лиофилизированный компонент изготовлен из культуральной жидкости культуры клеток почки кошки, инфицированной аттенуированным вирусом панлейкопении кошек, и культуральной жидкости линии клеток 2NIL, инфицированной вирусом бешенства и инактивированной бетапропиолактоном, с добавлением в качестве стабилизатора лактозы (75 мг/доза).
Жидкий компонент изготовлен из гликопротеиновой фракции герпесвируса кошек (тип 1), очищенного антигена калицивируса кошек, с добавлением масляного адъюванта (легкий жидкий парафин -700 мг/мл, эфир жирных спиртов и полиолов - 60 мг/мл, эфир жирных кислот и полиолов -80 мг/мл) до 1 мл.
Лиофилизированный компонент по внешнему виду представляет собой сухую однородную массу белого цвета, жидкий компонент - масляную эмульсию белого цвета.

Перед вакцинацией лиофилизированный компонент вакцины "Квадрикат" объединяют с жидким компонентом. Для этого с помощью стерильного шприца жидкий компонент вакцины переносят во флакон с лиофилизированным компонентом и тщательно встряхивают. Подготовленный таким образом препарат необходимо использовать немедленно.

Что Вы хотели сказать, разместив фото двух флакончиков, учитывая, что один разводят другим? Умные люди прививали леукорефилином, а ревакцинировали квадрикетом, но никак не дважды лупить вакцину с бешенством.

[ingrid007]

Укажите пожалуйста, у каких врачей или в каких работах можно почитать или получить подтверждение тому, что вы пересказываете своими словами (ссылки на статьи или выписки из историй болезни с именами конкретных врачей, от которых вы узнали то, о чем сообщили).
В основе руководства - не мифы.
http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

Т.е. Вы всерьез утверждаете, что размещение теоретических простыней с единственной, ничем не обоснованной фразой о пожизненном иммунитете от пан, а далее словеса о пользе прививок, являются безусловным доказательством правоты данного утверждения? Вольному воля, верьте во что хотите, однако одна простая вещь, рискните ка привить положительного по пан методом ПЦР нобиваком и посмотрим, где окажется хваленый пожизненный иммунитет. Вы даже не задаетесь вопросом почему носителей пан не прививают живой вакциной, а ответ на этот вопрос не оставляет камня на камне от чуши о пожизненном иммунитете.
Если Вы утверждаете, что не видите, как повторно переболевают кошки в прайдах даже на этом ресурсе, Вы либо лукавите, либо не понимаете того, о чем пытаетесь рассуждать. Масса случаев с опровергающими Вашу теоретическую благодать анализами.
Мир розовых пони и реальность сильно отличаются друг от друга.

[ingrid007]

Я для СЕБЯ РЕШИЛА
Я это всё написала в расчете на постоянный прайд 3-5-7 кошек. и БОЛЬШЕ СТРОГО НИКОГО НЕ ПРИВОДИТЬ!!!!!!!!

Ну вот поэтому и будут снова и снова переболевать кошки рино и калици, уходя в жуткую хронь, латентную форму этих вирусов никто не отменял, непривитый хроник будет выделять вирус в пространство, вирулентность вируса нарастает, он активно мутирует и, как результат, постоянно переболевают все независимо от прививок. Всю свою жизнь кошки варятся в этом вирусном котле и конца этому нет. Получается ерунда.
Про носительство короны и отказ от прививок вообще не поняла, про пан всё сказала выше.

[vikidm]

КАЛИЦИ- теперь выскажу всё что знаю!
штаммов более 29......Вакцины содержат малое количество штаммов.

Нобивак- 4,6 lg БОЕ калицивируса кошек (штамм F9)
Пуревакс -инактивированного бромоэтиленимином антигена (мёртвая) калицивируса кошек (штаммы FCV 431 и G1)
Квадрикат и Фел-О-Вакс (штамм 255)

Таким образом, отвечая на вопрос относительно защиты кошек, можно однозначно сказать, что кошки, привитые вакцинами содержащими штамм F9, более надежно защищены от КАЛ И ЦИ ВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ, чем кошки, привитые вакцинами, со держащими вакцинный штамм 255.

кот Жора (с помойки умирающий от калици), живёт у меня ПЯТЬ ЛЕТ. И именно у него в последствии перенесенного калицивируса, возникает аутоиммунное заболевание лимф.-плазмоц. стоматит /гингивит,
подтверждённый Гистологией.
Других котов я ежегодно (до этого момента) прививала Пуревакс, периодически рассматриваю их зубы и дёсна- отлично!
Значит, в Пуревакс (хоть там и мёртвый компанент калици), сдерживает другие штаммы.
Далее, чтобы лишний раз не прививать ПАН, переходим на Нобивак-ДУкэт. Как поведёт себя он ?

[ingrid007]

По моим многолетним ощущениям нобивак лучше всех показал себя с пан, рино, калици. К сожалению, масса штаммов вирусов и ограниченное их кол-во в вакцине приводит к периодическому переболеванию, нобивак лучший, но не панацея. Пуревакс слаб. Квадрикат пробивается на счет раз.
Но к имеющейся когорте агрессивных быстро мутирующих штаммов мы сами добавляем кучу своих не прививая/выборочно прививая животных, а слепое доверия к врачам, пересказывающим то, что услышали на семинарах-междусобойчиках, наносит огромный, непоправимый вред животным, потому что веты не несут абсолютно никакой ответственности за то что говорят и делают с нашими животными, более того, у них нет никакой статистически подтвержденной базы.

Далее, чтобы лишний раз не прививать ПАН, переходим на Нобивак-ДУкэт. Как поведёт себя он ?

Предпочитаю не проводить испытания новой вакциной на собственных кошках. Как подсказывает опыт, года 3 всё новое будет проходить обкатку, я опасаюсь "сырых" нововведений. Будем поглядеть.

[Birmacat14]

По моим многолетним ощущениям нобивак лучше всех показал себя с пан, рино, калици. К сожалению, масса штаммов вирусов и ограниченное их кол-во в вакцине приводит к периодическому переболеванию, нобивак лучший, но не панацея. Пуревакс слаб.

У меня не такой большой опыт, я просто ручки, но проживаю в Германии. Прививать и носителей и не носителей рекомендуют ежегодно. Считается, что прививка ослабляет течение болезни, это я про калицивирус. Прививают всех нобиваком, это стандарт. Кошка, которая привезла калицивирус и ежемесячно имела обострения, укрепила своё здоровье после первой же прививки нобиваком, это мой личный опыт, обострения прекратились.
На корону не обращают внимания вообще, она есть у большинства кошек.
Кот с гингивитом прививается тоже, нобивак трикэт, возможно, будем удалять зубы. Котят у нас теперь прививают 3 раза, 2 реваккцинации. Опыта с ПАН к счастью не имею, от бешенства не прививаю, у нас не актуально и кошки содержатся в квартире.

[ingrid007]

У меня не такой большой опыт, я просто ручки, но проживаю в Германии. Прививать и носителей и не носителей рекомендуют ежегодно. Считается, что прививка ослабляет течение болезни, это я про калицивирус. Прививают всех нобиваком, это стандарт. Кошка, которая привезла калицивирус и ежемесячно имела обострения, укрепила своё здоровье после первой же прививки нобиваком, это мой личный опыт, обострения прекратились.
На корону не обращают внимания вообще, она есть у большинства кошек.
Кот с гингивитом прививается тоже, нобивак трикэт, возможно, будем удалять зубы. Котят у нас теперь прививают 3 раза, 2 реваккцинации. Опыта с ПАН к счастью не имею, от бешенства не прививаю, у нас не актуально и кошки содержатся в квартире.

Очень интересно, спасибо.
А с чем связана аж тройная первичная вакцинация, если в Германии, говорят, эпидемиологическая обстановка спокойная?

[Birmacat14]

Очень интересно, спасибо.
А с чем связана аж тройная первичная вакцинация, если в Германии, говорят, эпидемиологическая обстановка спокойная?

Контингент животных меняется. Ввозят много животных из Испании, Румынии, Греции ,стран СНГ с благотворительной целью. С ними вирусы, глисты и т.д.У многих соседей исключительно приютские животные из неблагополучных стран. Я себе 5х из России привезла, а с ними калици, герпес,глистов и даже лишай.Тройная вакцинация считается надёжнее. С улицы и из клиники заразу принести практически невозможно. Бездомных на улицах городов нет, пишут, что есть дички (кошки) на фермах и в больших зелёных массивах.

[ficus]

По моим многолетним ощущениям

Масса случаев с опровергающими Вашу теоретическую благодать анализами.

В словесном потоке не увидела выписки из историй болезни и имена врачей, которые вам все это сообщили.

[ficus]

Очень интересно, спасибо.
А с чем связана аж тройная первичная вакцинация, если в Германии, говорят, эпидемиологическая обстановка спокойная?

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

группа VGG рекомендует вводить базовые вакцины щенкам и котятам несколько раз, причем последняя доза должна быть введена в возрасте 16 недель или старше, после чего должна быть выполнена ревакцинация в возрасте 6 или 12 месяцев. Если в силу культурных традиций или по финансовым обстоятельствам возможно лишь однократное проведение вакцинации домашнего животного, это должна быть вакцинация базовыми вакцинами в возрасте 16 недель или старше.
--
. В тех случаях, когда, например, приходится принять решение о вакцинации конкретного животного базовой вакциной единственный раз за всю его жизнь, группа VGG хотела бы подчеркнуть, что эту единственную вакцинацию оптимально провести в то время, когда животное способно на наилучший иммунный ответ, т.е. в возрасте старше 16 недель.
--
Причины, по которым у щенка после вакцинации не сформировался защитный иммунитет, могут быть разными:

(1) Материнские антитела нейтрализовали вакцинный вирус
Это самая частая причина неудач при вакцинации. Но при введении последней дозы вакцин в возрасте старше 16 недель материнские антитела должны опуститься до достаточно низкого уровня (Friedrich & Truyen 2000) [EB1], и у большинства щенков успешно произойдет активная иммунизация.

(2) Вакцина слабо иммуногенна
Слабая иммуногенность может быть результатом ряда факторов, действующих на разных этапах, от стадии разработки и производства вакцины до ее введения животному. Например, причинами неудачи при вакцинации могут являться выбранный штамм вируса, история его пассажей, ошибки, допущенные на производстве при изготовлении конкретной партии вакцины.
--
Группа VGG ознакомились с последними исследованиями, согласно которым до одной трети котят могут не ответить на последнее введение базовой вакцины в возрасте 16 недель, а часть котят может все еще иметь блокирующие вакцину материнские антитела в 20-недельном возрасте (DiGangi et al. 2012, Jakel et al. 2012). Группа VGG отмечает, что одно из этих исследований было проведено на относительно небольшом количестве животных преимущественно одной породы в условиях питомника, и полагает, что эти данные могут быть не вполне применимы к популяции кошек в целом. Тем не менее, группа VGG увеличила рекомендуемый возраст для последней вакцинации в первичной серии введения базовых вакцин с 14-16-недельного возраста до возраста 16 недель или старше [EB1].
--
Таким образом, рекомендации группы VGG о проведении базовой вакцинации котят согласуются с графиками, предложенными выше для щенков: начало в 6-8 недель и затем повторение вакцинации каждые 2-4 недели до возраста 16 недель или старше. Поэтому число первичных базовых вакцинаций котенка будет определяться возрастом, когда его начали вакцинировать, и выбранным интервалом между ревакцинациями. Возможные схемы представлены в Таблице 5. Согласно этим рекомендациям, если начать вводить вакцины в возрасте 6 или 7 недель, потребуется курс из четырех первоначальных введений базовых вакцин, а если начать вводить вакцины в возрасте 8 или 9 недель, то только из трех.
--
Неотъемлемой частью базовой вакцинации котят является ревакцинация, которая традиционно проводилась либо в возрасте 12 месяцев, либо через 12 месяцев после введения котенку последней вакцины первичной серии. Основной целью этой ревакцинации является скорее обеспечение развития защитного иммунного ответа у кошек, которые не смогли выработать иммунитет после введения какой-нибудь из вакцин первичной базовой серии, а не необходимость усилить иммунный ответ. Возраст 12 месяцев, по-видимому, исторически был выбран для введения этой вакцины как подходящее время для того, чтобы пригласить владельца прийти на прием для первого ежегодного ветеринарного осмотра («диспансеризации»). Следовательно, в случае, если конкретный котенок не дал иммунного ответа на какую-либо из трех первичных базовых вакцинаций, он может быть не защищен вплоть до 12-месячного возраста, когда он получит следущую дозу вакцины. Этим, вероятно, объясняются случаи заболевания у некоторых вакцинированных котят в возрасте моложе 12 месяцев. Группа VGG пересмотрела такую практику и предполагает, что ветеринарные врачи могли бы сократить это возможное окно восприимчивости путем переноса ревакцинации с 52-недельного возраста на 26-недельный (или, по сути, на любой момент времени между возрастом 26 и 52 недель; при этом 26-недельный возраст представляется удобным временем ее проведения). Для этого потребуется, чтобы владельцы домашних животных четко понимали, с чем связаны такие рекомендации, поскольку, как указано в Таблице 5, внедрение такого протокола будет означать, что вакцинация котенка, начатая в возрасте 6 или 7 недель, может повлечь за собой до пяти визитов в клинику с целью вакцинации в первые 6 месяцев его жизни. После ревакцинации базовыми вакцинами в возрасте 26 недель вводить их еще раз не потребуется как минимум в течение следующих 3 лет (для кошек с низким риском заражения). Как и для щенков, принятие метода вакцинации в возрасте 26 недель не исключает проведение первого ежегодного медицинского осмотра в возрасте 12 или 16 месяцев.

[ingrid007]

В словесном потоке не увидела выписки из историй болезни и имена врачей, которые вам все это сообщили.

Поднапрягитесь и вспомните эпидемии пан на передержках, где Вы держали своих кошек, все они ныне либо в ЧС или НП.
Если Вы до сих пор не поняли, что "рекомендации" Ваших кумиров, возможно, ценны и имеют шанс в благополучных по вирусам/бактериям странах со своими территориальными штаммами, но применительно к российским реалиям с нашей спецификой и мутациями это чушь и профанация - о чем с Вами говорить? Желаете верить в сказки - в добрый путь, но не вводите в заблуждение других людей.
Кроме того, отчет перед Вами держать я не обязана, убеждать Вас в в чем-то также не планирую, я не Вам пишу.

[ingrid007]

Контингент животных меняется. Ввозят много животных из Испании, Румынии, Греции ,стран СНГ с благотворительной целью. С ними вирусы, глисты и т.д.У многих соседей исключительно приютские животные из неблагополучных стран. Я себе 5х из России привезла, а с ними калици, герпес,глистов и даже лишай.Тройная вакцинация считается надёжнее. С улицы и из клиники заразу принести практически невозможно. Бездомных на улицах городов нет, пишут, что есть дички (кошки) на фермах и в больших зелёных массивах.

В Королеве есть вет. клиника "Доктор Ай", при клинике и в клинике непосредственно живут нездоровые животные-инвалиды - без почек фактически, с пулей практически в сердце, глубокие старики 18-ти лет - те, кого не пристроишь или те, кто не могут жить без постоянной мед. помощи - так вот абсолютно все без исключений прививаются каждые 6 месяцев нобиваком - и никто не болеет.

[ficus]

Т.е. Вы всерьез утверждаете, что размещение теоретических простыней с единственной, ничем не обоснованной фразой о пожизненном иммунитете от пан, а далее словеса о пользе прививок, являются безусловным доказательством правоты данного утверждения? Вольному воля, верьте во что хотите, однако одна простая вещь, рискните ка привить положительного по пан методом ПЦР нобиваком и посмотрим, где окажется хваленый пожизненный иммунитет. Вы даже не задаетесь вопросом почему носителей пан не прививают живой вакциной, а ответ на этот вопрос не оставляет камня на камне от чуши о пожизненном иммунитете.
Если Вы утверждаете, что не видите, как повторно переболевают кошки в прайдах даже на этом ресурсе, Вы либо лукавите, либо не понимаете того, о чем пытаетесь рассуждать. Масса случаев с опровергающими Вашу теоретическую благодать анализами.
Мир розовых пони и реальность сильно отличаются друг от друга.
Поднапрягитесь и вспомните эпидемии пан на передержках, где Вы держали своих кошек, все они ныне либо в ЧС или НП.
Если Вы до сих пор не поняли, что "рекомендации" Ваших кумиров, возможно, ценны и имеют шанс в благополучных по вирусам/бактериям странах со своими территориальными штаммами, но применительно к российским реалиям с нашей спецификой и мутациями это чушь и профанация - о чем с Вами говорить? Желаете верить в сказки - в добрый путь, но не вводите в заблуждение других людей.
Кроме того, отчет перед Вами держать я не обязана, убеждать Вас в в чем-то также не планирую, я не Вам пишу.


Кроме того, отчет перед Вами держать я не обязана, убеждать Вас в в чем-то также не планирую, я не Вам пишу.

У меня было "ощущение", что мне. По крайней мере, грамматически предложения были построены так, что вы обращались ко мне. Тогда, пожалуйста, выражайтесь так, чтобы высказывания не были обращены ко мне.
И почитайте все же ответ на свой вопрос, почему в первичной серии руководство рекомендует вводить вакцины более 2 раз и не только в Германии.

[ingrid007]

У меня было "ощущение", что мне. По крайней мере, грамматически предложения были построены так, что вы обращались ко мне. Тогда, пожалуйста, выражайтесь так, чтобы высказывания не были обращены ко мне.
И почитайте все же ответ на свой вопрос, почему в первичной серии руководство рекомендует вводить вакцины более 2 раз и не только в Германии.

ficus, если я отвечаю на Ваш вопрос, тогда это имеет отношение к Вам, вот как сейчас. В остальных случаях я высказываю свое мнение, отличное от Вашего, и Вас это затрагивает только потому,что:

.... не вводите в заблуждение других людей.

У меня нет желания с Вами препираться и дискутировать, потому не старайтесь.
Вопрос от тройной вакцинации также был адресован не Вам, однако, Вы удивитесь, я прочла и Ваш ответ, спасибо.

[ficus]

В Королеве есть вет. клиника "Доктор Ай", при клинике и в клинике непосредственно живут нездоровые животные-инвалиды - без почек фактически, с пулей практически в сердце, глубокие старики 18-ти лет - те, кого не пристроишь или те, кто не могут жить без постоянной мед. помощи - так вот абсолютно все без исключений прививаются каждые 6 месяцев нобиваком - и никто не болеет.

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

--
85. Требуются ли более высокие титры антител для защиты от контрольного заражения
тяжелой болезнью животному, у которого закончена начальная серия вакцинации для
щенков/котят?
Для CDV, CAV-2, CPV-2 и FPV ответом будет «нет». Наличие антител (в каком бы то ни было титре)
указывает на то, что у этого животного есть защитный иммунитет и иммунологическая память.
Более частое введение животному вакцин в попытке увеличить титры антител – бессмысленное
занятие. Невозможно создать «больший иммунитет», пытаясь повысить титр антител.

Если Вы до сих пор не поняли, что "рекомендации" Ваших кумиров, возможно, ценны и имеют шанс в благополучных по вирусам/бактериям странах со своими территориальными штаммами, но применительно к российским реалиям с нашей спецификой и мутациями это чушь и профанация - о чем с Вами говорить?

http://www.wsava.org/sites/default/files/V...-%20Russian.pdf

30. Правда ли, что лучше использовать вакцины, содержащие местные штаммы
возбудителей, чем международные вакцины?
Нет доказательств в пользу того, что международные базовые вакцины неспособны обеспечить
хорошую защиту против CDV, CAV-1, CAV-2, CPV-2, FPV, FCV, FHV-1 и вируса бешенства по
всему миру. В большинстве случаев видоизменение штаммов не затрагивает ключевые
протективные (защищающие) антигены, и такие антигены сохраняются среди всех штаммов
данного микроорганизма. А вот для бактерий рода Leptospira включение в вакцину дополнительных
серогрупп локального значения может привести к усилению защиты.

В Королеве есть вет. клиника "Доктор Ай", при клинике и в клинике непосредственно живут нездоровые животные-инвалиды - без почек фактически, с пулей практически в сердце, глубокие старики 18-ти лет - те, кого не пристроишь или те, кто не могут жить без постоянной мед. помощи - так вот абсолютно все без исключений прививаются каждые 6 месяцев нобиваком - и никто не болеет.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4864943/

J Vet Intern Med. 2016 Mar-Apr; 30(2): 602–610.
Published online 2016 Mar 6. doi: 10.1111/jvim.13917
PMCID: PMC4864943
Risk Factors for Development of Chronic Kidney Disease in Cats
N.C. Finch,corresponding author 1 H.M. Syme, 2 and J. Elliott 3

One hundred and forty‐eight client‐owned geriatric (>9 years) cats.
==
Results
==
In the final multivariable Cox regression model, annual/frequent vaccination (P value, .003; hazard ratio, 5.68; 95% confidence interval, 1.83–17.64), moderate dental disease (P value, .008; hazard ratio, 13.83; 95% confidence interval, 2.01–94.99), and severe dental disease (P value, .001; hazard ratio, 35.35; 95% confidence interval, 4.31–289.73) predicted development of azotemic CKD.
==
Prevention of decreased renal function may involve minimization of lifelong exposure to risk factors. Doing so potentially includes maintenance of good oral health and avoiding excessive vaccination of cats.